近年來，隨著核酸測序技術的重大進步，將腸道菌群不僅與腸道疾�。ɡ�如炎癥性腸�。┞�(lián)系起來的研究已顯著增加或結直腸癌，但也涉及其他廣泛的醫(yī)學疾病，包括代謝紊亂甚至精神健康疾病。這導致了這樣的假說，即通過糞菌移植對腸道微生物群的修飾可能在多種疾病中具有治療作用。

糞菌移植是一種治療性干預措施，其中將來自一個或多個健康供體的糞便處理成糞便漿液（FS），然后輸送到接受者的腸道中。雖然糞菌移植最好是作為復發(fā)的療法建立艱難梭菌感染，提供了用于炎性病癥的用途糞菌移植的，尤其是潰瘍性結腸炎。關注公眾號：腸道微生態(tài)研究院

盡管其用途越來越廣泛，但既沒有標準化的供體篩查也沒有標準化的糞便處理。這種標準化的缺乏延伸到臨床試驗，其中有超過200個注冊的使用糞菌移植的，使得結果難以比較。令人擔憂的是，糞菌移植還經(jīng)常在私家診所進行，甚至由患者本人進行，以證實未經(jīng)證實的適應癥和完全不受管制的方式。

當前的糞菌移植糞便處理指南旨在治療艱難梭菌結腸炎，并且基于缺乏證據(jù)的專家意見。通過在間隙糞菌移植結果的確切機制艱難梭菌在糞便處理協(xié)議從糞便不是已知的，和變化似乎對糞菌移植的功效用于該適應癥影響不大。這導致設計用于艱難梭菌的方案在使用糞菌移植作為其他適應癥的試驗中采用了感染，其作用機制可能不同。盡管已知暴露于氧氣會導致許多專性厭氧細菌感染迅速死亡，但這些方案通常涉及使周圍空氣中的糞便均勻化。

目前，幾乎沒有證據(jù)可指導臨床醫(yī)生選擇糞便處理方法。通常不嘗試對已加工的糞菌移植供體材料中的微生物組組成進行表征，并且在進行該操作時，通常需要對提取的糞便DNA進行高通量測序。這種方法將檢測源自有活力和無活力生物體的DNA，因此，指示哪些細菌具有活力并能夠在受體中復制的能力有限。培養(yǎng)方法僅能分離出總腸道菌群的一小部分，因此不適合表征加工過程對許多常見厭氧菌的影響。

克服這些挑戰(zhàn)的策略是將分子技術（如下一代測序和靶向定量PCR分析）與單疊氮化丙啶樣品處理（PMA－qPCR）結合使用。PMA是一種紅色熒光染料，可選擇性進入細胞膜受損的細胞。暴露于光下，PMA將與這些細胞中的DNA共價結合，從而抑制PCR擴增。這樣，樣品材料的PMA處理允許僅從樣品中的活細胞中選擇性擴增DNA 。在這項研究中應用的PMA－qPCR方法經(jīng)過特別優(yōu)化，可用于糞便中進行移植，并與培養(yǎng)方法進行了比較。

我們報告厭氧均質化，有氧均質化和凍融對糞便微生物群處理的供體糞便中細菌的活力和功能能力的影響。

糞菌移植糞便（FS）處理

從糞便中收集糞便作為糞菌移植供體進行臨床試驗。所有捐助者都通過了篩選調查表，用于確定潛在的糞菌移植捐助者。在現(xiàn)場收集糞便，并在15分鐘內(nèi)進行處理。將凳子分成兩等份，重至少30 g。將每個等分試樣（在240 V Waring SS515實驗室混合器中以22，000 rpm的速度）與生理鹽水（NS）和甘油混合，以產(chǎn)生由25％（wt ／ vol）糞便，65％NS和10％糞便組成的糞便漿液（FS）。如前所述甘油。在第一等份（ANO 2糞便混合和PMA處理在厭氧室內(nèi)的厭氧條件下進行。在第二等分試樣中，在環(huán)境空氣中執(zhí)行相同的步驟。將所得的FS在－80 o C的50 mL離心管中冷凍。為了評估凍融的效果，將厭氧處理過的FS的50 mL等分試樣在－80 o C下儲存？48 h，然后在室溫下于厭氧室內(nèi)融化。在處理或PMA處理期間，凍融的樣品未暴露于氧氣。熱殺傷通過使解凍FS的1毫升等分至99進行℃30分鐘。

新鮮，冷凍，解凍和熱滅活的FS的稀釋和PMA處理

緊接上述過程之后，將純凈的FS（糞便含量的25％）在磷酸鹽緩沖液（PBS）中稀釋100倍，并在無RNase的1．5 mL透明試管中分成6個95μL等分試樣美國馬薩諸塞州）。如上所述，在有和沒有PMA的情況下，一式三份處理稀釋的樣品。將樣品保存在－80提取之前℃。PMA處理是使用專門開發(fā)的協(xié)議進行的，并已針對糞便進行了驗證。通過將1 mg PMA（Biotium Inc．，F(xiàn)remont，CA，USA）溶解在1 mL 20％二甲基亞砜中來制備PMA儲備液。對于PMA處理，將5μLPMA儲備液添加到95μL樣品中以達到100μMPMA終濃度。在室溫下于黑暗中孵育30分鐘后，將樣品暴露于LED燈（Aqua Zonic，新加坡）中20分鐘。在未經(jīng)PMA處理的對照等分試樣中，添加5μLPBS代替PMA。對照樣品與匹配的PMA處理的樣品進行相同的孵育和曝光。

微生物組成的測定

從整個（100μL）未紡樣品中提取DNA。根據(jù)制造商的說明，使用PowerLyzer PowerSoil DNA分離試劑盒（MO BIO實驗室，卡爾斯巴德，加利福尼亞州，美國）提取DNA，并保存在－20o C下。
通過對細菌16S rRNA基因的V4高變區(qū)進行配對末端測序，確定糞便樣本的微生物組成。如前所述，在Illumina MiSeq平臺上進行了擴增子測序。配對末端讀段使用先前描述的生物信息學流水線［合并，解復用，并使用到微生物生態(tài)學（QIIME）軟件（v1．9．1的）定量數(shù)據(jù)分析進行分析。使用針對97％相似度聚類的SILVA 16S rRNA參考數(shù)據(jù)庫（版本128）的開放參考方法，將序列分配給操作分類單位（OTU）。對所有樣本進行二次采樣，深度達到6188個序列讀數(shù)。使用QIIME計算用于確定分類單元豐富度（觀察物種）和多樣性（PD整棵樹）的alpha多樣性指標。

將所有樣本中零計數(shù)的分類單元歸一化為單一計數(shù)。通過計算相對于所有分類群中厭氧處理的匹配對照的相對豐度倍數(shù)變化的log2值，確定分類群相對豐度的變化。根據(jù)log2倍變化總和的反對數(shù)除以檢測到分類單元的供體數(shù)，計算出分類群相對豐度平均倍數(shù)變化。分析中僅包括每個供體中至少一個對照組中存在的細菌類群（序列計數(shù)≥2），并且在8個供體中至少7個中存在。

物種特異性細菌計數(shù)

總細菌水平，丁酰－CoA：乙酸CoA－轉移酶基因，厭食厭氧桿菌，普氏桿菌，哈里氏桿菌，羅斯伯氏菌／真細菌，雙歧桿菌。Alistipes putredinis和Bacteriodes spp。使用QuantStudio 6實時PCR系統(tǒng)（Applied Biosystems，F(xiàn)oster City，CA，USA），使用先前描述的qPCR測定法（在補充表1中詳述）測定DNA。該Subdoligranulum變量qPCR分析是作為這項研究的一部分（見補充方法）。大腸桿菌使用基于探針的測定法，使用KAPPA PROBE FAST ROX Low Master Mix試劑（南非開普敦，Kapa Biosystems）擴增DNA。使用SYBR綠色熒光試劑（PowerUp SYBR Green Master Mix，Applied Biosystems）進行所有其他PCR測定。定量PCR測定法為丁酰輔酶A：乙酸輔酶A轉移酶基因，苛養(yǎng)菌，包括A． hadrus，霍氏真桿菌，羅斯氏／ E。直腸和S．變量，從供體糞便中提取的DNA的10倍稀釋系列用作陽性qPCR標準。

通過將在PMA存在下擴增的細胞數(shù)量除以在匹配的未處理對照中擴增的細胞數(shù)量來確定每個樣品中存活的細菌細胞的比例。為了確定在熱滅活的標本中可行的比例，將在經(jīng)過PMA處理的熱滅活的樣品中擴增的細胞數(shù)量除以在熱滅活之前的對照樣品中擴增的細胞數(shù)量。熱滅活的標本用作陰性對照，代表在不可行標本中預期的擴增水平。

代謝組學功能評估

如前所述，我們使用體外發(fā)酵模型評估了差異處理的糞便漿料的功能能力。當與發(fā)酵底物高直鏈玉米玉米淀粉（HAMS）孵育時，該方法評估樣品中微生物群產(chǎn)生SCFA的能力。簡而言之，將已如前所述處理過的ANO 2或O 2的糞菌移植供體（n ＝ 8）的冷凍糞便糞便樣品解凍，并在嚴格的厭氧條件下與HAMS一起孵育。加熱殺菌的糞便漿料（n ＝ 2）和HAMS（n＝ 2）用作陰性對照。通過火焰離子化檢測的氣相色譜法（Hewlett－Packard6890； Palo Alto，CA，USA）測定SCFA水平。孵育前和在37°C搖動厭氧孵育24小時后，測量乙酸，丁酸和丙酸水平。使用4－甲基戊酸（Sigma－Aldrich）作為內(nèi)標對結果進行標準化。使用Wilcoxon配對對的符號秩檢驗比較兩組中的SCFA產(chǎn)生

統(tǒng)計分析

使用GraphPad Prism 7．03軟件進行統(tǒng)計分析。顯著性（p值＜0．05）使用配對t檢驗對參數(shù)數(shù)據(jù)進行確定，而Wilcoxon配對對有符號秩檢驗用于非參數(shù)數(shù)據(jù)進行確定。

供體特征

捐助者的中位年齡為28．5歲（21－41歲），男女比例相等。相同數(shù)量的捐助者具有東南亞和歐洲遺產(chǎn)（補充表2）。

加工方法對糞便中細菌活力的影響
立即進行厭氧處理后，F(xiàn)S中存活細菌的平均比例為0．50±0．24（平均值±SD）。在環(huán)境空氣中處理后，該比例下降到0．19±0．07，在厭氧處理后進行一個凍融循環(huán)后，該比例為0．23±0．11。？與單獨的厭氧處理相比，在環(huán)境空氣中處理后（p ？＝ 0．007）和凍融后（p ＝ 0．027），觀察到存活的細菌細胞比例顯著降低。在所有加工方法中，活細菌的比例均大于在熱滅活的標本中檢測到的比例（p＞ 0．001）。

使用16S rRNA基因qPCR結合PMA處理確定為可行的細菌比例。通過將在PMA處理的樣品中擴增的活細胞除以在未經(jīng)PMA處理的對照樣品中擴增的細胞總數(shù)，來確定活細胞的比例。在新鮮需氧條件下（ANO 2），新鮮需氧條件下（O 2），在厭氧處理過的標本中冷凍和解凍一個周期（FT1）或在熱殺死后（HK），評估糞便中的細菌生存力。（條形圖表示8個供體糞便樣本的平均值±SD＝ p ＜0·05， ＝ p ＜0·01；成對t檢驗）。

微生物群的多樣性

在PMA處理后，在厭氧條件下處理的標本中檢測到的活類群多樣性明顯低于使用標準方法（無PMA）處理的標本（圖2； 分類群豐富度：p ＜0．001；PD整棵樹：p＝ 0．007）。與ANO 2處理（p＝ 0．023）或FT樣品（p＝ 0．023）相比，在環(huán)境空氣（O 2）中處理后，觀察到的可行分類單元豐富度顯著降低。ANO 2和FT組之間沒有觀察到多樣性差異。O 2和ANO 2之間以及O 2和FT組之間的PD整樹多樣性差異不顯著。

通過16S rRNA基因擴增子測序評估有無PMA處理后來自8個供體的糞便微生物群移植材料的分類單元豐富度。存活多樣性（PMA處理組）顯著低于對照樣本中觀察到的多樣性，即使在厭氧條件下立即處理的樣本中（＝ p ＜0·001，成對t檢驗）。當僅比較在厭氧條件下（ANO 2），環(huán)境空氣（O 2）或在厭氧處理的樣品（FT1）冷凍和融化一個周期后處理的樣品之間的可行多樣性時，在處理過的O 2樣品中觀察到的物種明顯較低，而標本的凍融并沒有顯著降低多樣性，箱形圖表示中位數(shù)和IQR，誤差線表示最小值到最大值；＝ p ＜0·05； Wilcoxon配對配對簽署等級測試）。

可行的微生物群組成

在所有樣品中顯示最大相對豐度的五個分類單元（OTU）分別屬于擬桿菌屬，普氏桿菌屬，雙歧桿菌屬，費氏桿菌屬和漆螺菌科（平均相對豐度分別為0．21、0．09、0．05、0．05和0．05）。為了確定哪個類群受環(huán)境氧氣或凍融處理的影響最大，按相對豐度倍數(shù)變化對類群進行排序。在環(huán)境空氣中處理后，有19個分類單元的相對豐度下降了2．5倍或更多，而凍融組中只有2個分類單元。受環(huán)境空氣處理影響最大的分類單元包括Faecalibacterium，Subdoligranulum，Eubacterium hallii，reeutale，Roseburia和Anaerostipes，它們代表了健康人類腸道微生物群中主要的丁酸酯生產(chǎn)分類單元。埃希氏菌－志賀氏菌和阿利斯提比斯是唯一的類群，在環(huán)境氧氣或凍融條件下相對豐度增加了2．5倍或更多，并且僅在環(huán)境空氣中處理后才觀察到。

在環(huán)境空氣中處理后（O 2對ANO 2）或在凍融后（FT1對ANO 2），存活的分類單元的相對豐度變化。淺灰色條表示相對豐度降低，深灰色條表示相對豐度升高。選定的細菌類群通過qPCR進一步評估（箭頭）。僅描繪了相對豐度變化至少2·5倍的分類單元。

為了證實在分類單元相對豐度中觀察到的變化，通過定量PCR確定了上面列出的受處理嚴重影響的分類單元的絕對水平。這包括對所有主要丁酸鹽生產(chǎn)者的相對豐度進行≥2．5倍的評估，以及對那些總體流行率最高的分類單元（細菌／ Prevetolla和雙歧桿菌屬）的評估。與相同組的標準分析相比，厭氧處理組中活菌（經(jīng)PMA處理）的相對細菌數(shù)量的變化在補充資料中顯示。

靶向擴增活微生物

通過使用靶向定量PCR分析，可以確定屬于特定細菌物種的活細胞的比例。用于測定F． prausnitzii，S．變量，A． hadrus，霍氏真桿菌，和羅斯氏／ E．直腸包括作為這些類群表明＞在相對豐度2．5倍或更大的下降以下在環(huán)境空氣中處理。細菌桿菌／普氏桿菌的測定。和雙歧桿菌屬。由于這些是我們隊列中相對豐度最高的屬，因此也進行了研究。每種加工條件下各個供體的結果見補充表3a–c。

通過特定的qPCR分析確定為可行的細菌比例。通過將在PMA處理的樣品中擴增的活細胞除以在未經(jīng)PMA處理的對照樣品中擴增的細胞總數(shù)來確定活細胞的比例。在新鮮厭氧條件，新鮮需氧條件下處理，在厭氧處理后的標本中冷凍和解凍一個周期（FT1）或在熱殺死后（HK），評估糞便中的細菌生存力。箱形圖描繪了中位數(shù)和IQR，誤差棒描繪了來自8個單獨供體的糞便樣本的最小值至最大值。所有重要的比較均以星號表示（＝ p ＜0·05；＝ p ＜0·01；＝ p＜0·001；Wilcoxon配對配對簽署等級測試）。

觀察到對除了所有類群以下環(huán)境空氣處理活細菌的水平顯著減少羅斯氏／ E．直腸E（，觀察其處理的無顯著影響）。在F． prausnitzii的情況下，O 2組中活菌的比例與熱滅活的等分試樣沒有顯著差異。冷凍融化后，哈氏腸桿菌是唯一顯示絕對生存水平顯著降低的物種。

進行了大腸桿菌絕對豐度的評估，因為該分類單元顯示了在環(huán)境空氣中處理后相對豐度的最大增加。除一個人外，其他所有捐獻者中大腸桿菌的絕對擴增均低于定量閾值，不同處理方法之間無顯著差異（補充表3a－c）。阿利斯皮犬在環(huán)境空氣中處理后也顯示出相對豐度增加，但絕對豐度沒有增加。

使用半定量PCR方法估算丁酸CoA：乙酸酯CoA轉移酶基因（丁酸生物合成的主要途徑中的末端酶）編碼基因在活細菌細胞中的運輸（這被用作替代方法）。丁酸酯的整體生物合成能力）。當比較在環(huán)境空氣中處理的活細胞的擴增時，該酶的水平顯著低于從厭氧處理的樣品（p ？＝ 0．012）或凍融樣品（p ？＝ 0．001）的活細胞中檢測到的酶水平。在環(huán)境空氣中處理的活細胞中檢測到的丁酰輔酶A：乙酸酯輔酶A轉移酶基因的水平相當于已被熱殺死的樣品。

在一輪冷凍和冷凍后，在新鮮厭氧條件下（ANO 2），新鮮需氧條件下（O 2）擴增人腸道菌群中丁酸中心合成途徑的末端酶－丁酰－CoA：乙酸鹽CoA－轉移酶基因。在經(jīng)過PMA處理的樣品中，在厭氧處理的標本（FT1）中或在熱殺死后（HK）解凍。相對于純糞便漿液（FS對照）的10倍稀釋系列中的擴增，測量了丁酰輔酶A（CoA）CoA轉移酶基因水平。虛線代表測定的定量極限。箱形圖描繪了中值和IQR，誤差線描繪了來自8個個體供體的糞便樣本的最小值至最大值。明顯的比較用星號表示。（＝ p＜0·05； ＝p ＜0·01；＝ p ＜0·001；Wilcoxon配對配對簽署等級測試）。

SCFA生物合成

后發(fā)酵SCFA水平的成對比較表明微生物butyrogenic和產(chǎn)乙酸容量時供體糞便是在環(huán)境空氣（經(jīng)處理的O操作被顯著減少2 VS ANO 2，p ＝ 0．008和p ？＝ 0．016分別圖6）。相比之下，丙酸生物合成的顯著變化與氧氣暴露無關。

用高直鏈玉米玉米淀粉對糞菌移植糞便進行體外發(fā)酵后，丁酸和醋酸鹽的凈產(chǎn)量。匹配的樣品（n ＝ 8）在厭氧條件下（ANO 2）或在有氧條件下（O 2）處理。明顯的比較用星號表示。（＝ p ＜0·05； ＝ p ＜0·01； Wilcoxon匹配對有符號秩檢驗）。

目前，沒有什么證據(jù)可以指導臨床醫(yī)生使用糞菌移植如何最好地確保在糞便移植材料中保留供體微生物的生存能力。供體材料中微生物群的分析不是常規(guī)操作，執(zhí)行時，所用方法無法評估生存力�；�于PMA的方法能夠克服評估糞便中精煉細菌復雜群體生存能力的許多挑戰(zhàn)。然而，PMA方法的主要局限性在于它容易高估樣品中活細菌的數(shù)量。這意味著存活細胞的數(shù)量可能少于我們報告的數(shù)量。此外，對PMA處理所需的標本進行稀釋意味著將非常稀有的類群排除在這種類型的分析之外。
盡管存在這些局限性，但我們表明，報告糞菌移植材料中存在的微生物群的當前方法明顯高估了移植的活細菌的數(shù)量。平均而言，在嚴格的厭氧條件下立即處理后，在我們的研究中，糞便移植物中只有一半的細菌仍然可以存活。PMA樣品處理的使用還表明，這些移植物中細菌的多樣性明顯少于使用標準測序方法所報道的細菌多樣性。

我們觀察到供體間的實質性差異對樣品處理的影響�？梢酝ㄟ^微生物組組成的個體差異來解釋這種差異，從而導致微生物群落對氧氣的暴露和凍結具有不同的脆弱性，并表明需要對所有供體材料進行活力評估。

我們的研究表明，通過在環(huán)境空氣中混合糞便而使其均質化對其生存細菌組成產(chǎn)生深遠影響。在大多數(shù)臨床試驗中，環(huán)境空氣處理是默認操作，在美國，英國和歐洲共識性指南中都有描述，盡管在許多規(guī)程中，糞便是手動均質的，沒有像本研究那樣混合。與手動均質化相比，在高速混合過程中產(chǎn)生的增加的空氣流量可能會導致氧氣暴露增加，并且對氧氣敏感物種更加有害。

受氧暴露影響最大的專性厭氧腸共生種，是丁酸生物合成的主要貢獻者，包括費氏桿菌，變數(shù)亞種，真細菌，哈里氏桿菌和厭氧厭食菌。丁酸鹽是一種由腸道菌群發(fā)酵產(chǎn)生的短鏈脂肪酸。除了是結腸的，丁酸鹽的主要能量源，并具有二者的抗炎和抗致癌特性。降低的腔內(nèi)丁酸酯濃度或丁酸酯利用率與腸細胞三磷酸腺苷的消耗，緊密連接的喪失，粘液產(chǎn)生減少以及由此產(chǎn)生的結腸屏障破壞有關，具有炎癥和免疫學后果。

我們觀察到在大多數(shù)供體中可行的F． prausnitzii和A． hadrus的比例，以及丁酰輔酶A：乙酸酯輔酶A轉移酶基因的水平降低到在熱滅活的標本中檢測到的水平。在氧氣存在下進行處理。腸道內(nèi)產(chǎn)生丁酸鹽的細菌，特別是F． prausnitzii的相對減少與多種慢性疾病的存在有關，包括抑郁癥，肥胖癥，2型糖尿病和炎癥性腸病疾病。這些發(fā)現(xiàn)表明，在環(huán)境空氣中處理糞便可能會對使用糞菌移植實現(xiàn)抗炎或免疫調節(jié)結果的努力產(chǎn)生負面影響。

雙歧桿菌屬和擬桿菌屬分別是短鏈脂肪酸的主要生產(chǎn)者，乙酸鹽和丙酸鹽，并且像丁酸鹽一樣是重要的能量和信號分子。盡管它們的有益作用還不如丁酸酯，但這些代謝物還是重要的免疫和代謝調節(jié)劑。暴露于氧氣后，這些屬的成員的豐度也顯著降低。但是，仍然存在大量的剩余存活種群，特別是在擬桿菌屬的情況下。表明接受者的內(nèi)臟可能會再次擴張。

盡管冷凍確實會降低移植材料的整體生存能力（將整體生存能力降低至約25％），但可行的微生物群組成與經(jīng)過厭氧處理的新鮮標本沒有顯著差異。在冷凍融化的標本中，僅發(fā)現(xiàn)一種細菌，即哈氏真細菌（Eubacterium hallii）顯著減少。盡管哈氏腸桿菌是主要的丁酸酯生產(chǎn)者，但該功能也由其他幾種細菌執(zhí)行。該單一物種喪失的潛在臨床意義尚不確定。

除了通過在環(huán)境空氣中處理而使糞便中的有益共生細菌耗竭之外，潛在致病物種（例如大腸桿菌和其他耐氧革蘭氏陰性細菌）的相對豐度也會成比例增加。在我們的供者隊列中，大腸桿菌水平新鮮糞便含量非常低，沒有證據(jù)表明加工過程中絕對豐度增加。但是，樣品處理的延遲會導致在室溫下延長時間，這可能會導致大量機會病原體大量增加。丁酸產(chǎn)生厭氧菌具有耐氧物種的過度生長合并的損失可能會從健康供體的變換糞便移植材料進入糞便材料與微生物群分布更緊密地類似于那些與炎性腸病，2型糖尿病和大腸癌。

在厭氧室內(nèi)處理糞菌移植材料可實現(xiàn)重要共生物種的最佳保存。在艱難梭菌的背景下結腸炎，好氧處理似乎不會對臨床結果產(chǎn)生不利影響。但是，在對糞菌移植進行其他適應癥的調查時，應該嘗試最佳保存共生菌，而尚不清楚共生厭氧菌的損失如何影響臨床結果。我們研究的局限性在于沒有分析加工延遲的影響。盡管在這項研究中糞便標本在15分鐘內(nèi)進行了處理，但這在大多數(shù)臨床環(huán)境中是無法實現(xiàn)的，并且延遲幾個小時的處理更為典型。這種處理上的延遲可能導致活菌群組成的改變。先前許多采用分子策略的研究都報告，糞便分析的延遲與微生物群組成和生存力的變化有關等人評估了最多7個小時的增量時間延遲后，一位供體中糞菌移植材料的變化，并觀察到了這段時間內(nèi)微生物組組成發(fā)生變化的趨勢。這些報告得到了許多基于文化的研究的支持，這些研究表明，當處理延遲時，特別是在室溫下，并且樣品沒有在厭氧條件下存儲時，厭氧菌的回收率會降低。在進一步研究澄清影響或處理延遲之前，我們建議樣品收集和處理之間的時間越短越好。

處理后，糞便應立即在－80°C下冷凍。在滴注之前將樣品冷凍的能力很重要，因為它為完成包括病毒和寄生蟲在內(nèi)的病原體的系統(tǒng)測試提供了機會。冷凍還可以根據(jù)需要提供大便，以用于緊急臨床情況。我們的分析表明，盡管凍融確實會影響糞便的存活組成，但總體而言，這種作用相對有限。但是，各個供體微生物群對凍結的反應存在差異。在這項研究中，兩個供體的總體細菌生存力下降到單獨冷凍融化后環(huán)境空氣處理后的水平以下。

在糞菌移植臨床試驗的設計中，糞便加工在改變糞便移植物成分方面所起的作用已被廣泛忽略。堅持嚴格的厭氧糞便處理協(xié)議可能會導致在某些臨床情況下糞菌移植的收益增加。其他因素，例如糞便處理和儲存條件的延遲，可能對細菌生存力的影響與厭氧處理一樣大，但在本研究中未進行評估。用生存力測定法評估供體移植材料的組成，以確保微生物群組成包括范圍廣泛的活菌，其中一些對介導糞菌移植的治療作用可能至關重要，這對將來的試驗將是有益的。